Цель исследования - выделение эндофитных бактерий из древесины тополя лавролистного (Populus laurifolia Ldb.) и тополя душистого (Popu-lus suaveolens Fisch.). Задачи исследования: выде-лить эндофитные бактерии из древесины тополя лавролистного; выделить эндофитные бактерии из древесины тополя душистого; провести иден-тификацию микроорганизмов. Отбор образцов древесины проводили в начале октября стериль-ным возрастным буравом. Опилки древесины из центральной части ствола исследовали методом обрастания. В качестве питательной среды ис-пользовали мясо-пептонный агар. Опилки тополя лавролистного обрастали более интенсивно по сравнению с тополем душистым. Для определения ферментативной (биохимической) активности изучаемых бактерий использовали дифференци-ально-диагностические среды Гисса. Для изолятов бактерий была проведена идентификация путем секвенирования фрагментов гена 16S рРНК. Из чистых культур исследуемых штаммов бактерий выделяли бактериальную ДНК. Фрагмент гена 16S рРНК амплифицировали с использованием прайме-ров F27/1492R. Идентификацию бактерий осу-ществляли путем секвернирования соответ-ствующих фрагментов гена 16S рРНК и сравнения полученных последовательностей нуклеотидов с гомологичными из базы данных NCBI с использова-нием программ BLAST. Из древесины тополя лав-ролистного выделено 4 штамма бактерий видов: Bacillus pumilus, Lysinibacillus fusiformis, Staphylococ-cus pasteuri , Brenneria salicis. Из древесины тополя душистого выделено 3 штамма бактерий видов: Bacillus safensis, Brenneria populi. Штаммы видов Bacillus pumilus, Bacillus safensis, Lysinibacillus fusi-formis, Staphylococcus pasteuri являются потенци-ально хозяйственно ценными видами бактерий. Изучена биохимическая активность выделенных штаммов относительно мальтозы, глюкозы, са-харозы, сорбита, маннита и лактозы.
бактериальные эндофиты, тополь лавролистный, тополь душистый, древе-сина
1. Бакулин В.Т. Особенности анатомического строения древесины тополя белого, произрастающего в Западной Сибири // Научные ведомости. Сер. «Естественные науки». - 2012. - Т. 18, № 3 (122). - С. 5-14.
2. Иванников С.П. Тополь. - М.: Лесн. пром-сть, 1980. - 82 с.
3. Цавкелова Е.А., Чердынцева Т.А., Нетрусов А.И. Образование ауксинов бактериями, ассоциированными с корнями орхидей // Микробиология. - 2005. - Т. 74, № 1. - С. 55-62.
4. Максимов И.В., Абизгильдина Р.Р., Пусенкова Л.И. Стимулирующие рост растений микроорганизмы как альтернатива химическим средствам защиты от патогенов (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. - 2011. - Т. 47, № 4. - С. 373-385.
5. Taghavi S., Barac T., Greenberg B., Borremans B., Vangronsveld J., van der Lelie D. Horizontal gene transfer to endogenous endophytic bacteria from poplar improves phytoremediation of toluene // Appl. Environ. Microbiol. - 2005. - № 71. - Р. 8500-8505.
6. Lelie D. van der, Taghavi S., Monchy S., Schwender J., Miller L., Ferrieri R., Rogers A., Wu X., Zhu W., Weyens N., Vangronsveld J., Newman L. Poplar and its Bacterial Endophytes: Coexist-ence and Harmony // Plant Science. - 2009. - № 28. - Р. 346-358.
7. Мелентьев А.И. Аэробные спорообразующие бактерии Bacillus Cohn. в агроэкосистемах. - М.: Наука, 2007. - 147 с.
8. Margesin R., Schinner F. Potential of halotolerant and halophilic microorganisms for biotechnology // Extremophiles. - 2001. - Vol. 5. - P. 73-83.
9. Zhuang W.Q., Tay J.-H., Maszenan A.M., Tay S.T.L. Bacillus naphthalinovorans sp. nov.from oil-contaminated tropical marine sediments and its role in napththalene biodegradation // Appl. Micro-biol. Biotechnol. - 2002. - Vol. 58. - P. 547-553.
10. Ren J.-H., Li H., Wang Y.-F., Wu X.-Q. Biocontrol potential of an endophytic Bacillus pumilus JK-SX001 against poplar canker // Biological Control - 2013. - № 67 (3). - P. 421-430.
11. Cawoy H., Bettiol W., Fickers P., Ongena M. Bacil-lus - Based Biological Control of Plant Diseases // Pesticides in the Modern World - Pesticides Use and Management. - Rijeka: INTECH, 2011. - P. 273-302.
12. Марданова А.М., Лутфуллин М.Т., Шалавина М.А. и др. Поиск и выделение новых штаммов бактерий-антагонистов фитопатогенных микромицетов рода Fusarium // Биоразнообразие и экология грибов и грибоподобных организмов северной Евразии: мат-лы всерос. конф. с междунар. участием. - Екатеринбург: Изд-во Урал. гос. ун-та, 2015. - С. 149-150.
13. Mayer F., Kronstad J.W. Breaking the bad: Bacillus blocks fungal virulence factors // Microbial Cell. - 2017. - № 4 (11). - P. 384-386.
14. Kothari V.V., Kothari R.K., Kothari C.R., Bhatt V.D.,Nathani N.M., Koringa P.G., Joshi C.G., Vyas B.R.M. Genome sequence of salt-tolerant bacillus safensis strain vk, isolated from saline desert area of Gujarat, India // Genome Announcements. - 2013. - № 1 (5). - P.e00671- e00683.
15. Kakade P.D., Chaphalkar S.R. Isolation and purifi-cation of antibacterial peptide from Bacillus safen-sis endophytica bacteria from Anthocephalus ka-damba // International Journal of Current Microbi-ology and Applied Sciences. - 2017. - Vol. 6, № 1. - P. 504-511.
16. Moore F.P., Barac T., Borremans B., Oeyen L., Vangronsveld J., van der Lelie D., Campbell C.D., Moore E.R.B. Endophytic bacterial diversity in pop-lar trees growing on a BTEX-contaminated site: the characterization of isolates with potential to en-hance phytoremediation // Syst Appl Microbiol. - 2012. - № 29. - P. 539-594.
17. Suhandono S., Kusumawardhani M.K., Aditiawati P. Isolation and molecular identification of endophytic bacteria from rambutan fruits (Nephelium lappaceum L.) cultivar binjai // HAYATI Journal of Biosciences. - 2016. - № 23. - P. 39-44.
18. Mehta J., Dilbaghi N., Dudeja S.S., Yadav A., Sharma P. Decolourization of simulated dye in aqueous medium using bacterial strains // Europe-an Journal of Advances in Engineering and Tech-nology. - 2015. - № 2 (3). - P. 9-18.
19. Черпаков В.В. Болезнь водяных знаков («Wa-termark») на ивах (Salixspp.) в России // Актуальные проблемы лесного комплекса. - 2015. - № 43. - С. 111-118.
20. Stefansson J. Screening for the occurrence of Brenneriasalicis in willows in Skåne, Sweden. - Alnarp: Swedish University or Agricultural Scienc-es, 2013. - 14 p.
